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中國福際,World’s Foregene

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斑馬魚直接PCR試劑盒

無需進行費時而昂貴的DNA純化。

樣品需求量小,少到1mg魚尾鰭或10枚魚卵即可進行實驗。

無需研磨、破碎等特殊處理,操作簡便。

優化的PCR體系,使PCR具有更高的特異性、更強的PCR反應抑制物耐受性。

              產品名稱              

斑馬魚直PCR試劑盒

Zebra Fish Direct PCR Kit

貨  號

TP-01411

TP-01413

規  格

200 T

2000 T

價  格

970.00

6,069.00

描  述

快速的從斑馬魚等淡水魚類組織、尾鰭或魚卵樣本中釋放出基因組DNA,用于PCR反應,適合快速大規模基因檢測;試劑盒包含裂解液/PCR Mix

產品介紹

本產品采用獨特的裂解緩沖液體系可以快速的從斑馬魚等淡水魚類組織、尾鰭或魚卵樣本中釋放出基因組DNA,用于PCR反應,因此特別適合大規模基因檢測。

裂解緩沖液釋放基因組DNA過程在65條件下10-30 min內完成,不需要其他去蛋白、RNA等的過程,即可將釋放出的微量DNA作為模板進行PCR反應。

2× PCR EasyTM Mix具有很強的PCR反應抑制物耐受性,能以待測樣本的裂解液為模板,進行高效特異性擴增。該試劑包含Foregene D-Taq DNAPolymerasedNTPsMgCl2、反應緩沖液、PCR優化劑和穩定劑。與裂解緩沖液配合使用能夠快速簡便地對樣品進行檢測,并具有靈敏度高、特異性強、穩定性好等特點。

D-Taq DNA polymeraseForegene為直接PCR反應專門研制出的DNA polymeraseD-Taq DNA polymerase對多種PCR反應抑制劑具有極強的的耐受性、在各種復雜反應體系中均能高效擴增痕量的DNA,擴增速度可達2Kb/min,特別適合進行直接PCR反應。


試劑盒應用

適用范圍斑馬魚等淡水魚類

樣本裂解釋放的DNA:僅用作PCR板。

試劑盒可用于以下用途:轉基因型鑒定、動物基因分型等。


試劑盒局限性

擴增片段≤1kb;超過1kb,擴增效率下降或者擴增失敗。

PCR產物如用于測序建議先進行PCR產物純化。

PCR產物可能會有點突變,如用于基因克隆,請知悉。

PCR產物3’末端隨機加A尾。


試劑盒內容

Buffer FP提供斑馬魚組織裂解反應所需的環境。

Foregene Protease在裂解緩沖液的環境下,裂解斑馬魚組織,釋放基因組DNA

2× PCR EasyTM Mix包含福際生物特別改造的D-Taq DNA PolymerasedNTPsMgCl2、反應緩沖液、PCR反應增強劑、優化劑以及穩定劑等。PCR反應時,只需將適當的裂解混合液、引物、ddH2O添加到2× PCR EasyTM Mix中即可用于PCR反應。

6× DNA Loading BufferLoading Buffer中不含有SDS。建議在進行瓊脂糖凝膠電泳時,配搭使用試劑盒附贈的6× DNA Loading Buffer,以便取得好的電泳結果。切勿使用含有SDSLoading Buffer,否則在電泳時會在泳道中有一大團拖尾亮光,影響實驗結果。



儲存條件

全程低溫冰盒運輸,保證試劑盒Part IPart II處于<4狀態。

本試劑盒Part I保存在2-8

v 試劑Buffer FP,在干燥條件下,可保存12個月;如需保存更長時間可置于2–8

v  試劑Foregene Protease,具有獨特配方,為保證其活性和穩定性,請保存于4,保存時間為12個月。

v  試劑6× DNA Loading Buffer,可置于4-20長期保存。

本試劑盒Part II保存在-20

v  試劑2× PCR EasyTM Mix,在-20條件下可保存12個月;若頻繁使用,也可置于4短期保存(10天內用完)


操作流程

斑馬魚

  • 正對照、待測樣本均無條帶

    Answer

    在試劑盒的使用過程中往往會遇到許多問題,比如:沒有PCR擴增產物、PCR特異性差等,以下就分別對使用斑馬魚直接PCR系列試劑盒可能會遇到的問題進行分析。建議在進行直接PCR的同時設置陽性對照或陰性對照以便后續分析實驗結果。

    1.   PCR反應體系或反應條件不合適。

    建議:使用梯度PCR摸索PCR最佳反應條件。

    2.    PCR試劑保存不當失去活性。

    建議:2× PCR EasyTM Mix應保存于-20,使用時避免反復凍融。若使用頻繁,可在4短時間存放。

    3.   引物設計問題。

    建議:嘗試重新設計引物進行檢查。


  • 正對照有目的條帶,待測樣本無條帶或條帶弱

    Answer

    1.    PCR條件沒有使用正確。

    建議:請仔細確認2× PCR Mix的類型,對應相應的PCR條件進行PCR擴增。

    2.    加入組織裂解液過量。

    建議:增大反應體系,或減少裂解液的用量。

    3.    樣本裂解混合液保存不當或保存時間過久,DNA基因組已經降解。

    建議:裂解液可在4保存2-3天,盡量使用新制備的裂解液混合液進行PCR

    4.    模板加入量不適合。

    建議:在反應體系10-20%范圍內優化模板加入量。反應效性能較差時,可以降模板濃度調節到低于10%的范圍。

    5.    PCR循環數不足。

    建議:適當增加PCR的循環數,推薦在35-40循環為佳。因為模板復雜,一般PCR反應要比用純化的DNA模板多5-10個循環為佳。


  • 非特異性擴增

    Answer

    1.    退火溫度偏低。

    建議:適當提高退火溫度。或對退火溫度做一個梯度摸索。

    2.    PCR循環數過多。

    建議:適當降低循環次數,推薦在35-40循環為佳。

    3.    引物濃度偏高。

    建議:適量降低引物用量。通常引物終濃度為0.2μM可以得到較好結果。反應性能較差時,可以在0.1-0.5μM范圍內調整引物濃度。

    4.    模板加入量過多。

    建議:將模板加入量控制在10-20%。反應效性能較差時,可以降模板濃度調節到低于10%的范圍。


  • 空白對照出現目的條帶

    Answer

    1.    操作工具或試劑污染。

    建議:實驗所有試劑或器材均應高壓滅菌。操作時應小心輕柔,防止將靶序列吸入加樣槍內或濺出離心管外。

    2.    樣本間交叉污染。

    建議:每個取樣器只對一個樣本使用;或取完一個樣本后,將取樣器刃口浸入2%的次氯酸鈉溶液中,反復涮洗,然后用干凈的紙巾擦干殘液。

    3.    PCR產物污染。

    建議:如果實驗室檢測同類型樣本多,最好使用UNGPCR產物污染系統的試劑盒進行實驗。


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